Целью эпидемиологического надзора при чуме является оценка эпизоотического состояния природных очагов для определения риска заражения чумой людей и предупреждения антропонозного распространения инфекции. Слежение за эпизоотическими проявлениями чумы осуществляется при эпизоотологическом обследовании, которое в Казахстане проводится в достаточном объеме, несмотря на более чем 20-ти летнее эпидемиологическое благополучие. Это позволяет сохранять готовность здравоохранения на случай осложнений по чуме как природного, так и преднамеренного характера, что является основной целью в обеспечении биологической безопасности государства. По результатам эпидемиологического мониторинга пополняются данные о закономерностях природной очаговости чумы. Кроме природных факторов эпидемического потенциала - состояние популяций носителей и переносчиков чумы, важное значение имеют социальные факторы, среди которых декретированный контингент населения, который по роду своей деятельности имеет повышенный риск заражения, и другие многочисленные показатели. В представленной работе уделено особое внимание роли верблюдов в эпидемиологии чумы. Полученные новые данные по этим животным, по сравнительной генетической характеристике штаммов чумного микроба, выделенных в разные годы, по обеспеченности противочумной службы нормативным актами позволяют совершенствовать показатели и стандарты эпидемиологического надзора по чуме для повышения действенности профилактических мероприятий в Республике Казахстан

В данной статье освещены результаты эпизоотологического мониторинга инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота и меры профилактики этой инфекции. Исследование показало, что болезнь ИРТ КРС распространилась по всему миру, не считая некоторых европейских государств, а именно Норвегии, Швеции, Финляндии, Литвы, Молдавии, Болгарии, Греции, Словакии, Италии, Румынии и Чешской Республики. Это постоянная вспышка в тропических государствах африканского контитента, на Ближнем Востоке, Юге и юго-востоке Азии, а также в некоторых частях Южной Америки. В целях профилактики ИРТ КРС в мире широко применяются живые и инактивированные моно - и ассоциированные вакцины, а также в европейских государствах используются маркированные вакцины, позволяющие отличить больных животных от вакцинированных. В Российском государстве для профилактики болезни ИРТ КРС используется живая вакцина «ТК-А» (ВИЭВ), для профилактики ИРТ, парагрипп-3, вирусной диареи КРС ассоциированная вакцина «ТРИВАК» (ВИЭВ), против парагриппа-3, ИРТ, ассоциированная (ВНИИЗЖ) вакцина, против ИРТ КРС, вирусная диарея, респираторная-синцитиальная инфекция телят, рота- и коронавирусным заболеваниям применяется комбинированная инактивированная вакцина «КОМБОВАК» (ЗАО НПО «Нарвак») с ее модификацией и другие вакцины. В Республике Казахстан в настоящее время болезнь ИРТ КРС встречается в стадах КРС в Акмолинской, Алматинской, Атырауской, Актюбинской, ВКО, Карагандинской, Костанайской, Павлодарской, СКО, ЗКО, Кызылординской области. В Республике Казахстан в настоящее время для профилактики заболевания ИРТ КРС используются вакцина ТРИВАК производства Ставропольской биофабрики, используемая против возбудителей ИРТ КРС, вирусной диареи и парагриппа – 3, а также вакцины Бовилис – IBR (Голландия), Кэтлмастер Голд FP5 С5 (США).

Вирусная диарея крупного рогатого скота (ВД КРС) – контагиозная остропротекающая болезнь КРС, которая регистрируется во многих странах мира. Данное заболевание вызывается пестивирусами Pestivirus A и Pestivirus B, относящимися к роду Pestivirus, семейства Flaviviridae. Болезнь наносит значительный экономический ущерб скотоводству, приводя к нарушениям репродуктивной функции (снижение репродуктивной способности, задержка родов, ранняя эмбриональная гибель, аборты, врожденные аномалии) и снижению продуктивности (заболеваемость, высокая смертность телят, снижение надоев). В последние годы вспышки ВД КРС происходили в нескольких регионах России и Китая, граничащих с Казахстаном, что указывает на высокий риск заноса инфекции в страну. Хотя Казахстан официально считается свободным от ВД КРС, имеются многочисленные указания на то, что данная инфекция присутствует во многих регионах страны, что требует применения эффективных контрольных мероприятий в рисковых по инфекции регионах. В настоящей статье приводятся методики для оценки эпизоотологической ситуации и прогнозирования вспышек, а также рекомендации по проведению ветеринарных мероприятий и контролю ВД КРС в Казахстане, основанные на результатах проведенного мониторингового исследования эпизоотологической ситуации и анализа рисков распространения ВД КРС на территории Казахстана в 2021-2023 гг

В данной обзорной статье представлены информации о эпидемиологии ортопоксвирусных инфекций в мире, их возбудителях согласно классификации Международного комитета по таксономии вирусов рода Orthopoxvirus, штаммах, используемых при разработке и выпуске вакцин, поколениях разработанных вакцин, а также о состоянии дел по ортопоксвирусной инфекции в Республике Казахстан

Болезнь Ньюкасла – это серьезное инфекционное заболевание, поражающее внутренние органы, нервную и дыхательную системы. Оно вызывается парамиксовирусом PMV-1 и имеет большое количество различных штаммов, которые могут вызывать различные формы заболевания. Эти формы иногда могут "маскироваться" под другие заболевания, такие как холера, бронхит, птичий грипп или ларинготрахеит. Болезнь Ньюкасла поможет выявить только точная диагностика. Заболеванию подвержены домашние птицы всех возрастов и пород, но чаще всего болезнь Ньюкасла диагностируется у домашних кур. Вспышки болезни Ньюкасла регистрируются по всему миру и могут создавать проблемы для крупных птицефабрик. Хотя болезнь Ньюкасла непосредственно не поражает людей, после контакта с инфицированным человеком может развиться состояние, похожее на грипп. Характерные признаки болезни Ньюкасла у птиц включают энцефалит, пневмонию и кровоизлияние во внутренние органы из-за их повреждения.
Исследование, проведенное в Карагандинской области Республики Казахстан, было направлено на изучение вспышки болезни Ньюкасла у домашней птицы в селе Ахмет Нуринского района. В ходе исследования были проведены ветеринарно-санитарные мероприятия, включающие отбор проб для лабораторной диагностики, вакцинацию поголовья и введение карантинных ограничений. Результаты исследования показали высокую эффективность принятых мер по локализации и ликвидации очага инфекции. Выявили вирус, что подчеркивает необходимость постоянного мониторинга эпизоотической ситуации. Полученные данные позволяют рекомендовать расширение программ вакцинации и усиление ветеринарного контроля на птицефабриках для предотвращения дальнейшего распространения болезни Ньюкасла.
Несмотря на то, что болезнь Ньюкасла известна ветеринарам уже не один десяток лет, но до сих пор не разработано метода ее лечения. Однако борьба с болезнью Ньюкасла у домашней птицы может быть достигнута с помощью изоляции и карантина инфицированных животных, программ вакцинации, мер биобезопасности на животноводческих объектах, мониторинга перемещений животных и эпиднадзора

В статье представлены результаты исследований по модификации методики реакции нарастания титра фага для аэромонадных бактериофагов. Применяя бактериофаги Аv-4 серии УлГАУ и Аh-4 серии УлГАУ, которые характеризуются высокими титрами литической активности и широким спектром специфического литического действия, были отработаны оптимальных параметры постановки реакции нарастания титра фага (количественный показатель реакции, имеющий диагностическое значение, и оптимальное время, обеспечивающее полноценное взаимодействие фага с бактериями). бактериями).Эмпирически установлено, что наиболее эффективными для постановки РНФ с целью индикации бактерий A. veronii bv.veronii и A.hydrophila в объектах санитарного надзора являются следующие параметры: концентрация индикаторной культуры, обнаруживаемая при постановке реакции – 103 - 104 м.к./мл/г, рабочее разведение бактериофага - 105 БОЕ/мл. Эксперименты по оптимизации методики постановки РНФ показали, что для обнаружения бактерий A. hydrophila и A. veronii bv. veronii в нестерильных пробах воды и рыбы в лабораторных условиях наиболее оптимальным является предварительное подращивание исследуемого материала в течение 2 ч при (29±1) 0С с последующим заражением фагами Аv-4 серии УлГАУ и Аh-4 серии УлГАУ и инкубированием смеси в течение 4 ч при (29±1) 0С. Исследование выполнено согласно тематическому плану-заданию Министерства сельского хозяйства Российской Федерации, регистрационный номер ЕГИСУ НИОКТР 123031600041-9.