СРАВНЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ КУЛЬТИВИРОВАНИЕ КЛЕТОК И ВИРУСОВ НА НОВОМ МИКРОНОСИТЕЛЕ SEPLIFE® LX-MC-DEX1 С СУЩЕСТВУЮЩИМИ МИКРОНОСИТЕЛЯМИ

микроносители представляют собой мелкие твердые частицы размером 90–350 мкм, на поверхности которых в виде монослоя растут клетки. Две основные свойства микроносителей являются клеточная адгезия и высокая продукция клеток. По результатам сравнительного исследования, проведенного по различным параметрам, было определено, что каждый микроноситель имеет свои преимущества и недостатки. В нашем исследовании сравнивались свойства микроносителей SEPLIFE® LX-MC-dex1 и Cytodex 3. По результатам исследований установлено, что LXMC-DEX1, содержащий искусственное вещество, по всем свойствам и удобству применения не уступает широко применяемому в производстве микроносителю Cytodex 3. Основным преимуществом микроносителя SEPLIFE® LX-MC-dex1 является его ценовая эффективность, то есть он в 5 раз дешевле, чем Cytodex 3. В связи с этим микроноситель SEPLIFE® LX-MC-dex1 был признан экономически выгодным

1. Van Wezel A. Growth of Cell-strains and Primary Cells on Micro-carriers in Homogeneous Culture// Nature. – 1967. – Vol. 216. – P. 64-65. https://doi.org/10.1038/216064a0

2. G.E. Healthcare Microcarrier Cell Culture: Principles and Methods. – 2005.

3. Kehoe D., Jing D., Lock L., Tzanakakis E. Scalable stirred-suspension bioreactor culture of human pluripotent stem cells. Tissue Eng. Part A. – 2010. – Vol.16. – P. 405-421. doi.org/10.1089/ten. tea.2009.0454

4. Forestell S., Kalogerakis N., Behie L., Gerson D. Development of the optimal inoculation conditions for microcarrier cultures Biotechnol//Bioeng. –2002. –Vol.39. – P. 305-313. doi.org/10.1002/ bit.260390308

5. Caron M., Emans P., Coolsen M., Voss L., Surtel D., Cremers A., van Rhijn L. Welting Redifferentiation of dedifferentiated human articular chondrocytes: comparison of 2D and 3D cultures Osteoarthr// Cartil. – 2012. – Vol.20. – P.1170-1178. doi: 10.1016/j.joca.2012.06.016

6. Kistner O., Barrett P., Mundt W., Reiter M., Schober-Bendixen S., Eder G., Dorner F. Development of a Vero cell-derived influenza whole virus vaccine//Dev. Biol. Stand. –1999. –Vol. 98. – P. 101-110. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/10494963 Barrett P., Mundt W., Kistner O., Howard M. Vero cell platform in vaccine production: moving towards cell culture-based viral vaccines//Expert Rev. Vaccines. – 2009. –Vol.8. – P. 607-618.

7. Montagnon B.J., Fanget B., Vincent-Falquet J.C. Industrial-scale production of inactivated poliovirus vaccine prepared by culture of vero cells on microcarrier//Clin. Infect. Dis. – 2004. –Vol.6. – P. 341- 344. doi: 10.1093/clinids/6.Supplement_2.S341

8. Montagnon B., Vincent-Falquet J.C., Fanget B. Thousand litre scale microcarrier culture of Vero cells for killed polio virus vaccine // Promising results Dev. Biol. Stand. –2003. –Vol.55. –P. 37-42. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/6677539

9. Montagnon B.J., Vincent-Falquet J.C., Saluzzo J.F. Experience with vero cells at Pasteur Mérieux Connaught// Dev. Biol. Stand. – 1999. – Vol.98. – P. 137-140.

10. Derakhti S., Safiabadi-Tali S.H., Amoabediny G., Sheikhpour M. Attachment and detachment strategies in microcarrier-based cell culture technology: A comprehensive review. – 2019. https:// doi.org/10.1016/j.msec.2019.109782

11. Reed I.J., Muench H.A. A simple method of estimating fifty per cent endpoints // American Journal of Hygiene. – 1938. –Vol.27. – P. 493-497.

12. ГОСТ 28085-2013 Средства лекарственные биологические для ветеринарного применения. Методы контроля стерильности.

13. Agathos Sart S.N. Large-scale expansion and differentiation of mesenchymal stem cells in microcarrier-based stirred bioreactors // S. Turksen (Ed.), Bioreactors in Stem Cell Biology, Humana Press, New York, NY. – 2015. –Vol.87. – P. 101-102. doi:10.1007/7651_2015_314

14. Tamura A., Kobayashi J., Yamato M., Okano T. Temperature-responsive poly (N-isopropylacrylamide)- grafted microcarriers for large-scale non-invasive harvest of anchorage-dependent cells. Biomaterials. – 2012. –Vol.33. – P. 3803-3812. doi:10.1016/j.biomaterials.2012.01.060

15. Tavassoli H., Alhosseini S.N., Tay A., Chan P.P.Y.,Weng Oh S.K., Warkiani M.E. Large-scale production of stem cells utilizing microcarriers: a biomaterials engineering perspective from academic research to commercialized products Biomaterials – 2018. –Vol.181. – P. 333-346. doi: 10.1016/j. biomaterials.2018.07.016

16. Dame M.K., Varani J. Recombinant collagen for animal product-free dextran microcarriers// In Vitro Cell Dev. Biol. – Anim. – 2009. –Vol.44. – P. 407-414. https://doi.org/10.1007/s11626-008-9139-4.

17. Badenes S.M., Fernandes T.G., Miranda C.C., Pusch Klein A., Haupt S., Rodrigues C.A.A.V., Diogo M.M., Brüstle O., Cabral J.M.M.S. Long-term expansion of human induced pluripotent stem cells in a microcarrier-based dynamic system//J. Chem. Technol. Biotechnol. – 2017. – Vol.92. – P. 492- 503. doi: 10.1002/jctb.5074

18. Fan Y., Hsiung M., Cheng C., Tzanakakis E.S. Facile engineering of xeno-free microcarriers for the scalable cultivation of human pluripotent stem cells in stirred suspension // Tissue Eng. Part A. – 2013. – Vol.20. – P.1-43. doi:10.1089/ten.TEA.2013.0219

19. Lam A.T.L., Li J., Chen A.K.L., Reuveny S., Oh S.K.W., Birch W.R. Cationic surface charge combined with either vitronectin or laminin dictates the evolution of human embryonic stem cells/microcarrier aggregates and cell growth in agitated cultures // Stem Cells Dev. – 2014. – Vol.23. – P. 1688- 1703. DOI: 10.1089/scd.2013.0645