Проведена диагностика чумы плотоядных с применением полимеразной цепной реакции в реальном времени (ПЦР-РВ). Для проведения ПЦР-РВ применялся флуоресцентный краситель SYBR Green I. С помощью ПЦР-РВ проверяли 106 собак в окрестностях города Бишкек. Из 106 собак, 10 были здоровыми и использовались в качестве контроля. Из 96 собак получены клинические образцы, из 87 выявлен возбудитель чумы плотоядных и 9 дали отрицательный результат. Метод ПЦР в последние годы успешно применяется в ветеринарной практике и в научных центрах страны для диагностирования инфекционных заболеваний сельскохозяйственных и домашних животных. В ветеринарной практике и науке при определении инфекционных заболеваний ПЦР является стандартной процедурой, которая позволяет определить наличие гена возбудителя. При чуме плотоядных применение метода ПЦР, считается необходимой процедурой, так как другие методы менее чувствительны и мало эффективны. Применение ПЦР-РВ упрощает диагностику, и экономит время проведения анализа, чем ПЦР в классическом варианте. Поэтому на сегодня, в нашей стране считается актуальной внедрение ПЦР-РВ в практическую ветеринарную диагностику.

стратегия элиминации вредных мутации у голштинской породы включает проведение генетического мониторинга распространенности скрытых наследственных аномалии с помощью молекулярно-генетических методов. В настоящее время существует тенденция увеличения количества наследственных заболеваний у высокопродуктивных племенных животных вследствие интенсивной селекции и инбридинга. Целью настоящего исследования были разработка новых и совершенствование существующих молекулярно-генетических способов диагностики носителей гаплотипов фертильности HH3, HH5 у коров голштинской породы и изучение уровня встречаемости указанных заболеваний.  Диагностика гетерозиготных носителей мутации в кодирующей части гена SMC2 проведена методом tetra-primer ARMS-PCR реакции, последовательности внешних и внутренних праймеров определены с помощью программы Primer 1. Для детекции носителей делеции в составе гена  TFB1M использованы аллельспецифические праймеры, размеры ПЦР продукта у гомозиготных здоровых животных 442 п.н., у гетерозиготных носителей 442 п.н. и 256 п.н. По результатам генетического мониторинга у исследуемой популяции частота гетерозиготных носителей гаплотипа фертильности HH3 была - 3,23%, HH5 - 8,35%. Рекомендуется с целью контроля риска заболеваемости племенного поголовья наследственными аномалиями проводить генетический    скрининг племенного поголовья молочных хозяйств с охватом диагностических исследований в пределах от 10% до 20% от общего поголовья.   

В данной статье представлены данные мониторинговых исследований по гриппу птиц в северных регионах Казахстана. Сбор образцов от домашней и дикой птицы проводили в северных регионах региона Казахстана. Обнаружение и типирование вируса гриппа проводили методом ПЦР и секвенированием. Биологическую активность выделенных вирусов определяли на 9-10-ти суточных развивающихся куриных эмбрионах. В результате исследований установлено, что причиной заболевания и гибели домашних птиц в хозяйствах Акмолинской и Северо-Казахстанской области в 2021 году является грипп птиц. Вирус гриппа А/H5N8 был обнаружен в образцах от домашних птиц, доставленных из хозяйств Акмолинской (53,8%) и Северо-Казахстанской (16,7%) областей, а также в образце от дикого гуся, обитавшей на озере Койбагар Костанайской области. Выделенные от диких и домашних птиц вирусы гриппа отнесены к субтипу  А/H5N8 к Кладе 2.3.4.4b по Евразийской линии II (Eurasian  HPAIV H5N8 Lineage II). Распространение гриппа птиц в популяции дикой и домашней птицы в северных районах Казахстана требует от ветеринарных служб принятия мер по разработке эффективных мер контроля с учетом данных молекулярной эпидемиологии.

Ячмень является одной из наиболее часто встречающихся зерновых культур в мире, а на территории Казахстана культура приобрела огромное сельскохозяйственное значение в связи с неприхотливостью в производстве в условиях сложного климата. Одним из перспективных направлений в сельском хозяйстве является выявления устойчивых к грибным заболеваниям сортообразцов. Главным же аспектом при использовании устойчивых сортов ячменя является улучшение качества продукции за счет частичного или полного отказа от химической обработки. В 2021-2022 гг. на опытном поле Казахского научно-исследовательского института земледелия и растениеводства была проведена полевая оценка устойчивости 46 сортообразцов озимого и ярового ячменя отечественного происхождения к наиболее распространенным в Казахстане грибным болезням (сетчатая пятнистость, темно-бурая пятнистость, ринхоспориоз и мучнистая роса). По результатам фитопатологической оценки среди сортообразцов ячменя отобраны источники устойчивости к основным грибным болезням. Обнаружено 7 сортообразцов озимого и ярового ячменя, устойчивых к нескольким грибным болезням. Выявленные образцы и сорта ячменя, устойчивые как к одному, так и к двум и более патогенам, могут быть использованы в селекционных программах по созданию устойчивых сортов ячменя.

Проблема «новых» инфекционных болезней в настоящее время приобрела особую актуальность для национальных и международных систем здравоохранения. Одной из таких инфекций является коронавирус SARS-CoV-2. В связи с быстрым распространением нового типа коронавируса в мире, важное место занимает проведение молекулярно-генетических исследований данного вируса. Это поможет понять природу вируса и разработать противовирусные препараты с целью профилактики заболевания. Цель - идентификация миссенс-мутации в гене ORF3a исследуемого коронавирусного штамма SARS-CoV-2/human/KAZ/Britain. В данной работе представлены результаты наработки и секвенирования гена ORF3a коронавирусного штамма SARS-CоV-2/human/KAZ/Britain. Для наработки и секвенирования методом Сэнгера гена ORF3a было разработано 4 пары праймеров, с перектытием 100-150 п.о. Анaлизировaны изменения в гене ORF3a по сравнению с другими штаммами, данные которых получены из базы данных GISAID. В результате полученные последовательности аминокислот гена ORF3a варианта В.1.1.7 были сравнены с эталонным штаммом hCoV-19/Wuhan/Hu-1/2019, где была определена одна мутация в позиции 149: W (триптофан) → L (лейцин). Также определена филогенетическая принадлежность исследуемого штамма вируса, где определена генетическая дистанция между исследованными штаммами вируса SARS-CoV-2. Таким образом, наибольшее сходство с исследуемым штаммом были: hCoV-19/Wuhan/Hu-1/2019, hCoV-19/England/MILK-9E05B3/2020, hCoV-19/Japan/IC-0446/2020, hCoV-19/Germany/NI-IOV-MHH15/2020, а штамм  hCoV-19/Argentina/PAIS-F0418/2021 значительно дистанцировал от штамма SARS-CoV-2/human/KAZ/Britain.

Одним из главных требовании к создаваемым новым вакцинам является их безопасность в применении, в том числе их стерильность, показатель водородных ионов и содержание бактериальных эндотоксинов (БЭ), являющиеся одними из основных показателей качества и безопасности. Соответствие данных параметров к нормам ГФ РК напрямую связано с качеством воды используемый в производственной линии. В данной статье представлены результаты работ по определению одних из основных параметров безопасности биопрепаратов, таких как стерильность, содержание бактериальных эндотоксинов и показатель водородных ионов.

Стерильность биопрепарата определялась методом фильтрации с последующим посевом на специфические бактериальные питательные среды. В результате установлено, что пробы очищенной и инъекционной воды свободны от посторонней микрофлоры, роста колонии не наблюдалось в течении 5-7 суток.   В пробах водопроводной и сточной воды наблюдается обильный рост колонии на бактериальных питательных средах, что подтверждает наличие сапрофитных микроорганизмов. Для определения бактериальных эндотоксинов был использован ЛАЛ-тест. В результате проведенных работ по определению содержания БЭ установлено, что в образцах очищенной и инъекционной воды концентрация БЭ составляет 0,15 МЕ/мл, тогда как концентрация БЭ в образцах сточной воды составляет 15 МЕ/мл, а в водопроводной воде 1,5 МЕ/мл, что также не превышает норму. При изучении показателей водородных ионов в испытуемых пробах рН показатель инъекционной воды равен – 7,16, очищенной воды – 6,84, водопроводной воды – 7,93, сточной воды – 7,03. Полученные показатели свидетельствуют о соответствии микробиологических показателей испытуемых проб воды нормам и требованиям ГФ РК.