ХАРАКТЕРИСТИКА БРУЦЕЛЛ, ЦИРКУЛИРУЮЩИХ НА ТЕРРИТОРИИ РЕСПУБЛИКИ КАЗАХСТАН

как известно, одним из экономически и социально значимых заболеваний, широко распространённых на территории Республики Казахстан (РК) является бруцеллёз, который занимает главенствующее место в общей инфекционной патологии животных. Бруцеллез является одной из наиболее опасных для людей зооантропонозных инфекционных болезней. Результаты сравнительных исследований по индикации возбудителя бруцеллеза в РК за несколько лет с помощью бактериологического метода и ПЦР свидетельствуют, что использование вышеуказанных методов для определения эпизоотологического статуса стад животных при первичной постановке диагноза на бруцеллез является нецелесообразным из-за низкой степени информативности этих тестов. ПЦР рекомендуется для идентификации и генотипирования выделенных культур бруцелл из патологического материала.

            В результате проведенных диагностических исследований биоматериала, полученного от животных из неблагополучных по бруцеллезу хозяйствующих субъектов Казахстана и приграничных стран (России и Киргизстана), авторами выделены культуры бруцелл, которые в последующем были подвержены изучению их биологических и молекулярно-генетических свойств. Для идентификации и генотипирования выделенных  культур бруцелл исследователли предлагают использовать MLVA, как наиболее эффективный метод, позволяющий достоверно определять их генотипические характеристики.

1. Базарбаев М. Бруцеллез животных (эпизоотология, диагностика и профилактика): монография / Базарбаев М., Тен В.Б., Канатбаев С.Г. – Караганда, 2018. – 461 с.

2. Методические указания по лабораторной диагностике бруцеллеза / Ветеринарное законодательство Республики Казахстан. – Астана. – 2005. – 23 с.

3. Шестопалов М. Ю. Практические аспекты использования полимеразной цепной реакции в лабораторной диагностике бруцеллеза: автореф. дис. канд. мед.наук. – Иркутск. – 1999. – 22 с.

4. Daugaliyeva A., Peletto S., Sultanov A., Baramova S., Acutis P.L., Adambaeva A., Tusipkanuly O., Usserbayev B. 2016. Development of a differential PCR assay for detection of Brucella abortus and Brucella melitensis: an analytical approach for monitoring of Brucella spp // In: Foods of Animal Origin. J. Food Qual. Hazards Control 3(2). – Р. 53-59.

5. Shevtsov A., Ramanculov E., Shevtsova E., Kairzhanova A., Tarlykov P., Filipenko M., Dymova M., Abisheva G., Jailbekova A., Kamalova D., Chsherbakov A., Tulegenov S., Akhmetova A., Sytnik I., Karibaev T., Mukanov K. 2015. Genetic diversity of Brucellaabortus and Brucellamelitensis in Kazakhstan using MLVA-16. Infect. Genet.Evol. – P.173-180. doi: 10.1016/j.meegid.2015.07.008.

6. Shevtsova E., Shevtsov A., Mukanov K., Filipenko M., Kamalova D., Sytnik I., Syzdykov M., Kuznetsov A., Zharova M., Karibaev T., Tarlykov P., Ramanculov E. 2016. Epidemiology of Brucellosis and genetic diversity of Brucella abortus in Kazakhstan. PLoS One 11 (12), e0167496. doi: 10.1371/journal.pone.0167496

7. Комитет экспертов ВОЗ по стандартизации биологических препаратов.//36 доклад. Женева, ВОЗ, 1988. – 137 с.

8. Bricker B.J., Halling S.M. Differentiation of Brucella abortus bv. 1, 2, and 4, Brucella melitensis, Brucella ovis, and Brucella suis bv. 1 by PCR (Дифференциация биоваров 1, 2 и 4 Brucella abortus, Brucella melitensis, Brucella ovis, и биовара 1 Brucella suis с помощью ПЦР). J Clin. Microbiol. – 1994. – №32, – Р. 2660-2666. doi: 10.1128/jcm.32.11.2660-2666.1994

9. Godfroid J., Scholz H.C., Barbier T., Nicolas C., Wattiau P., Fretin D., Whatmore A.M., Cloeckaert A., Blasco J.M., Moriyon I., Saegerman C., Muma J.B., Al Dahouk S., Neubauer H., Letesson J.J.// Brucellosis at the animal ecosystem, human interface at the beginning of the 21st century // Prev. Vet. Med. – 2011. – Vol. 102. P. 118-131. doi: 10.4269/ajtmh.2012.12-0327