biobБиобезопасность и БиотехнологияBiosafety and Biotechnology2707-72412957-5702Научно-исследовательский институт проблем биологической безопасности10.58318/2957-5702-2026-25-32-41biob-227Research ArticleСТАТЬИArticlesОценка восприимчивости лабораторных животных к вирусу оспы коров для выбора экспериментальной моделиAssessment of the Susceptibility of Laboratory Animals to Cowpox Virus for the Selection of an Experimental ModelАлиеваА. Б.AliyevaA. B.

Алиева Алина Бейсеновна, магистр естественных наук, старший научный сотрудник, 

пгт. Гвардейский.

Guardeyskiy.

a.aliyeva@biosafety.kzhttps://orcid.org/0000-0002-7701-5142БаракбаевК. Б.BarakbayevK. B.

Баракбаев Кайнар Базаркулович, кандидат ветеринарных наук, заведующий лабораторией,

пгт. Гвардейский.

Guardeyskiy.

https://orcid.org/0000-0002-5807-7604АзанбековаМ. А.AzanbekovaM. A.

Азанбекова Молдир Абдильдаевна, PhD, старший научный сотрудник,

пгт. Гвардейский.

Guardeyskiy.

https://orcid.org/0000-0002-5363-3501МұзарапД. И.MuzarapD. I.

Мұзарап Диас Ибрагимұлы, младший научный сотрудник,

пгт. Гвардейский.

Guardeyskiy.

https://orcid.org/0000-0001-9930-0297СәрсенқұловаН. А.SarsenkulovaN. A.

Сәрсенқұлова Нұрайым Айбекқызы, младший научный сотрудник, 

пгт. Гвардейский.

Guardeyskiy.

https://orcid.org/0000-0001-6034-6642МамбеталиевМ.MambetalievM.

Мамбеталиев Муратбай, кандидат ветеринарных наук, главный научный сотрудник,

пгт. Гвардейский.

Guardeyskiy.

https://orcid.org/0000-0003-4238-5116ЖугунисовК. Д.ZhugunissovK. D.

Жугунисов Куандык Даулетбаевич, PhD, генеральный директор, 

пгт. Гвардейский.

Guardeyskiy.

ТОО «Научно-исследовательский институт проблем биологической безопасности», Национальный холдинг «QazBioPharm»КазахстанLLP «Research Institute for Biological Safety Problems», National holding «QazBioPharm»Kazakhstan2026170520260253241Copyright © Алиева А.Б., Баракбаев К.Б., Азанбекова М.А., Мұзарап Д.И., Сәрсенқұлова Н.А., Мамбеталиев М., Жугунисов К.Д., 20262026Алиева А.Б., Баракбаев К.Б., Азанбекова М.А., Мұзарап Д.И., Сәрсенқұлова Н.А., Мамбеталиев М., Жугунисов К.Д.Aliyeva A.B., Barakbayev K.B., Azanbekova M.A., Muzarap D.I., Sarsenkulova N.A., Mambetaliev M., Zhugunissov K.D.Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.https://journal.biosafety.kz/jour/article/view/227

Вирус оспы коров относится к роду Orthopoxvirus и широко используется в качестве модели для изучения ортопоксвирусных инфекций. Несмотря на наличие данных о восприимчивости различных видов животных, оценка их восприимчивости в условиях стандартизированного эксперимента остаётся ограниченной.

Целью настоящего исследования явилась оценка восприимчивости лабораторных животных к вирусу оспы коров и обоснование выбора оптимальной экспериментальной модели.

В работе использовали штамм «COWPOX-CAM» вируса оспы коров. В качестве моделей применяли белых мышей, морских свинок и кроликов, инфицированных внутрикожно. Проводили клиническое наблюдение, оценивали течение инфекционного процесса и развитие патологических изменений.

У морских свинок инфекция протекала в лёгкой форме без летальных исходов. У белых мышей клинические проявления инфекции были слабо выражены и не сопровождались развитием характерных кожных поражений. Наиболее выраженная клиническая картина наблюдалась у кроликов и характеризовалась развитием локальных и системных проявлений инфекции.

Полученные результаты показали, что наибольшей восприимчивостью к вирусу оспы коров обладают кролики, что позволяет рассматривать их как оптимальную экспериментальную модель для изучения патогенеза инфекции и оценки эффективности вакцинных и терапевтических препаратов.

Cowpox virus, belonging to the genus Orthopoxvirus, is widely used as a model for studying orthopoxvirus infections. Despite the availability of data on the susceptibility of different animal species, its assessment under standardized experimental conditions remains limited.

The aim of this study was to assess the susceptibility of laboratory animals to cowpox virus and to substantiate the selection of an optimal experimental model.

The epizootic strain “COWPOX-CAM” of cowpox virus was used in this study. White mice, guinea pigs, and rabbits were employed as experimental models and infected via the intradermal route. Clinical observations were performed, and the course of the infectious process and the development of pathological changes were evaluated.

In guinea pigs, the infection was mild and not associated with mortality. In white mice, the clinical manifestations of infection were mild and were not accompanied by the development of characteristic skin lesions. In rabbits, a pronounced clinical course was observed, including both local and systemic manifestations of infection.

The results obtained indicate that rabbits demonstrate the highest susceptibility to cowpox virus and can be considered the most appropriate experimental model for studying the pathogenesis of infection and evaluating the efficacy of vaccines and therapeutic agents.

вирус оспы коровортопоксвирусывосприимчивостьэкспериментальная модельпатогенез инфекцииcowpox virusorthopoxvirusessusceptibilityexperimental modelpathogenesisИсследование выполнено при финансовой поддержке Комитета науки Министерства науки и высшего образования Республики Казахстан (№ BR218004/0223).ReferencesBruneau R.C., et al. Cowpox viruses: a zoo full of viral diversity and lurking threat. Viruses. 2023; 15(3), с. 623. https://doi.org/10.3390/v15030623.Bruneau R.C., et al. Cowpox viruses: a zoo full of viral diversity and lurking threat. Viruses. 2023; 15(3): 623. https://doi.org/10.3390/v15030623Riedel S. Edward Jenner and the history of smallpox and vaccination. Proceedings (Baylor University Medical Center). 2005;18(1): С. 21–25. https://doi.org/10.1080/08998280.2005.11928028.Riedel S. Edward Jenner and the history of smallpox and vaccination. Proceedings (Baylor University Medical Center). 2005;18(1): 21–25. https://doi.org/10.1080/08998280.2005.11928028Гаврилова Е.В. Ортопоксвирусные инфекции: эпидемиология, клиническая картина и диагностика. Проблемы особо опасных инфекций. 2013; № 4. С. 82–87.Gavrilova E.V. Ortopoksvirusnye infektsii: epidemiologiya, klinicheskaya kartina i diagnostika. Problemy osobo opasnykh infektsiy. 2013; №4: 82–87.Shchelkunov S.N. An increasing danger of zoonotic orthopoxvirus infections. PLoS Pathogens. 2013; 9(12):e1003756. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1003756.Shchelkunov S.N. An increasing danger of zoonotic orthopoxvirus infections. PLoS Pathogens. 2013; 9(12): e1003756. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1003756Shchelkunova G.A., Shchelkunov S.N. 40 years without smallpox. Acta Naturae. 2017; 9(4): С. 4– 12.Shchelkunova G.A., Shchelkunov S.N. 40 years without smallpox. Acta Naturae. 2017; 9(4): 4– 12.Львов Д.К. Оспа коров. В: Руководство по вирусологии: вирусы и вирусные инфекции человека и животных / под ред. Д.К. Львова. М.: Медицинское информационное агентство; 2013. С. 668–670.Lvov D.K. Ospa korov. In: Rukovodstvo po virusologii: virusy i virusnye infektsii cheloveka i zhivotnykh. Ed. D.K. Lvov. Moscow: Meditsinskoe informatsionnoe agentstvo; 2013: 668–670.Западнюк И.П., Западнюк В.И., Захария Е.А., Западнюк Б.В. Лабораторные животные: разведение, содержание, использование в эксперименте. Киев: Вища школа; 1983. 383 с.Zapadnyuk I.P., Zapadnyuk V.I., Zakhariya E.A., Zapadnyuk B.V. Laboratornye zhivotnye: razvedenie, soderzhanie, ispol'zovanie v eksperimente. Kiev: Vysshaya shkola; 1983. 383 p.Hutson C.L., Abel J.A., Carroll D.S., et al. Comparison of West African and Congo Basin monkeypox viruses in BALB/c and C57BL/6 mice. PLoS ONE. 2009;5(1):e8912. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0008912.Hutson C.L., Abel J.A., Carroll D.S., et al. Comparison of West African and Congo Basin monkeypox viruses in BALB/c and C57BL/6 mice. PLoS ONE. 2009;5(1): e8912. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0008912Marriott K.A., Parkinson C.V., Morefield S.I., et al. Clonal vaccinia virus grown in cell culture fully protects monkeys from lethal monkeypox challenge. Vaccine. 2007; 26(5): С. 581–588. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2007.11.038.Marriott K.A., Parkinson C.V., Morefield S.I., et al. Clonal vaccinia virus grown in cell culture fully protects monkeys from lethal monkeypox challenge. Vaccine. 2007; 26(5): 581–588. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2007.11.038Osorio J.E., Iams K.P., Meteyer C.U., Rocke T.E. Comparison of monkeypox virus pathogenesis in mice by in vivo imaging. PLoS ONE. 2009;4(8):e6592. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0006592.Osorio J.E., Iams K.P., Meteyer C.U., Rocke T.E. Comparison of monkeypox virus pathogenesis in mice by in vivo imaging. PLoS ONE. 2009;4(8): e6592. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0006592Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. 8th ed. Washington, DC: National Academy Press; 2011. 246 p.Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. 8th ed. Washington, DC: National Academy Press; 2011. 246 p.Hutson C.L., Olson V.A., Carroll D.S., et al. A prairie dog animal model of systemic orthopoxvirus disease using West African and Congo Basin strains of monkeypox virus. Journal of General Virology. 2009;90(2): С. 323–333. https://doi.org/10.1099/vir.0.005108-0.Hutson C.L., Olson V.A., Carroll D.S., et al. A prairie dog animal model of systemic orthopoxvirus disease using West African and Congo Basin strains of monkeypox virus. Journal of General Virology. 2009;90(2): 323–333. https://doi.org/10.1099/vir.0.005108-0Zaucha G.M., Jahrling P.B., Geisbert T.W., et al. The pathology of experimental aerosolized monkeypox virus infection in cynomolgus monkeys. Laboratory Investigation. 2001;81(12): С. 1581– 1600. https://doi.org/10.1038/labinvest.3780362.Zaucha G.M., Jahrling P.B., Geisbert T.W., et al. The pathology of experimental aerosolized monkeypox virus infection in cynomolgus monkeys. Laboratory Investigation. 2001;81(12): 1581–1600. https://doi.org/10.1038/labinvest.3780362Reed K.D., Melski J.W., Graham M.B., et al. The detection of monkeypox in humans in the Western Hemisphere. New England Journal of Medicine. 2004;350(4): С. 342–350. https://doi.org/10.1056/NEJMoa032299.Reed K.D., Melski J.W., Graham M.B., et al. The detection of monkeypox in humans in the Western Hemisphere. New England Journal of Medicine. 2004;350(4): 342–350. https://doi.org/10.1056/NEJMoa032299.Reith R.W., Williamson J.D. Pathogenesis of vaccinia and cowpox infections // Poxvirus and Iridovirus Meeting. 1996. С. 364.Reith R.W., Williamson J.D. Pathogenesis of vaccinia and cowpox infections. Poxvirus and Iridovirus Meeting. 1996: 364.Mims C.A. The response of mice to the intravenous injection of cowpox virus. British Journal of Experimental Pathology. 1968;49(4): С. 361–363.Mims C.A. The response of mice to the intravenous injection of cowpox virus. British Journal of Experimental Pathology. 1968;49(4): 361–363.Chen N., Li G., Liszewski M.K., et al. Virulence differences between monkeypox virus isolates from West Africa and the Congo Basin. Journal of Virology. 2005;79(20): С. 13100–13107. https://doi.org/10.1128/JVI.79.20.13100-13107.2005.Chen N., Li G., Liszewski M.K., et al. Virulence differences between monkeypox virus isolates from West Africa and the Congo Basin. Journal of Virology. 2005;79(20): 13100–13107. https://doi.org/10.1128/JVI.79.20.13100-13107.2005Americo J.L., Moss B., Earl P.L. Identification of wild-derived inbred mouse strains highly susceptible to monkeypox virus infection. Journal of Virology. 2010;84(16): С. 8172–8180. https://doi.org/10.1128/JVI.00521-10.Americo J.L., Moss B., Earl P.L. Identification of wild-derived inbred mouse strains highly susceptible to monkeypox virus infection. Journal of Virology. 2010;84(16): 8172–8180. https://doi.org/10.1128/JVI.00521-10Маренникова С.С., Щелкунов С.Н. Патогенные для человека ортопоксвирусы. М.: КМК; 1998. 386 с.Marennikova S.S., Shchelkunov S.N. Patogennye dlya cheloveka ortopoksvirusy. Moscow: KMK; 1998. 386 p.Hammarlund E., Lewis M.W., Carter S.V., et al. Multiple diagnostic techniques identify protective immunity against monkeypox. Nature Medicine. 2005;11(9): С. 1005–1011. https://doi.org/10.1038/nm1273.Hammarlund E., Lewis M.W., Carter S.V., et al. Multiple diagnostic techniques identify protective immunity against monkeypox. Nature Medicine. 2005;11(9): 1005–1011. https://doi.org/10.1038/nm1273McFadden G. Poxvirus tropism. Nature Reviews Microbiology. 2005;3(3): С. 201–213. https://doi.org/10.1038/nrmicro1099.McFadden G. Poxvirus tropism. Nature Reviews Microbiology. 2005;3(3): 201–213. https://doi.org/10.1038/nrmicro1099Онищенко Г.Г., и др. Ортопоксвирусы: современное состояние проблемы. Вестник РАМН. 2020;75(4): С. 300–305. https://doi.org/10.15690/vramn1360.Onishchenko G.G., et al. Ortopoksvirusy: sovremennoe sostoyanie problemy. Vestnik RAMN. 2020;75(4): 300–305. https://doi.org/10.15690/vramn1360Fenner F., Henderson D.A., Arita I., et al. Smallpox and its eradication. Geneva: World Health Organization; 1988. 1460 p.Fenner F., Henderson D.A., Arita I., et al. Smallpox and its eradication. Geneva: World Health Organization; 1988. 1460 p.Essbauer S., Pfeffer M., Meyer H. Zoonotic poxviruses. Veterinary Microbiology. 2010;140(3– 4): С. 229–236. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2009.08.026.Essbauer S., Pfeffer M., Meyer H. Zoonotic poxviruses. Veterinary Microbiology. 2010;140(3–4): 229–236. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2009.08.026Moss B. Poxviridae: the viruses and their replication. В: Knipe D.M., Howley P.M. Fields Virology. 6th ed. Philadelphia: Lippincott Williams & Wilkins; 2013. С. 2129–2159.Moss B. Poxviridae: the viruses and their replication. In: Knipe D.M., Howley P.M. Fields Virology. 6th ed. Philadelphia: Lippincott Williams & Wilkins; 2013: 2129–2159.Reynolds M.G., Damon I.K. Outbreaks of human monkeypox after cessation of smallpox vaccination. Trends in Microbiology. 2012;20(2): С. 80–87. https://doi.org/10.1016/j.tim.2011.12.001.Reynolds M.G., Damon I.K. Outbreaks of human monkeypox after cessation of smallpox vaccination. Trends in Microbiology. 2012;20(2): 80–87. https://doi.org/10.1016/j.tim.2011.12.001Kumar V., Abbas A.K., Aster J.C. Robbins and Cotran Pathologic Basis of Disease. 10th ed. Philadelphia: Elsevier; 2020. 1392 p.Kumar V., Abbas A.K., Aster J.C. Robbins and Cotran Pathologic Basis of Disease. 10th ed. Philadelphia: Elsevier; 2020. 1392 p.Murphy K., Weaver C. Janeway’s Immunobiology. 9th ed. New York: Garland Science; 2017. 904 p.Murphy K., Weaver C. Janeway’s Immunobiology. 9th ed. New York: Garland Science; 2017. 904 p.Гендон Ю.З., Чернос В.И. Информосомы клеток HeLa, заражённых вирусом осповакцины. Молекулярная биология. 1968; № 2. С. 727–735.Gendon Yu.Z., Chernos V.I. Informosomy kletok HeLa, zarazhennykh virusom ospovaktsiny. Molekulyarnaya biologiya. 1968; №2: 727–735.Mätz-Rensing K., Yue C., Ellerbrok H., et al. Limited susceptibility of rhesus macaques to cowpox virus infection. Primate Biology. 2017;4: С. 163–171. https://doi.org/10.5194/pb-4-163-2017.Mätz-Rensing K., Yue C., Ellerbrok H., et al. Limited susceptibility of rhesus macaques to cowpox virus infection. Primate Biology. 2017;4: 163–171. https://doi.org/10.5194/pb-4-163-2017Johnson R.F., Dyall J., Ragland D.R., et al. Aerosol exposure of rhesus macaques to cowpox virus Brighton Red. Journal of General Virology. 2016;97(9): С. 2213–2222. https://doi.org/10.1099/jgv.0.000538.Johnson R.F., Dyall J., Ragland D.R., et al. Aerosol exposure of rhesus macaques to cowpox virus Brighton Red. Journal of General Virology. 2016;97(9): 2213–2222. https://doi.org/10.1099/jgv.0.000538

The authors declare that there are no conflicts of interest present.